ЗАКАВЫЧЬТЕ (Jakeshorts @ 6-ое декабря 2007, 01:14 PM) [snapback] 440939 [/snapback]
гипертрофия увеличений все еще не приравнивает увеличенный anabolism. На родственном примечании - downregulating myostatin через follistatin!?
Комплексы Myostatin Follistatin и антагонизируют Myostatin-посредничанное ингибитирование myogenesis. Amthor h, Николас g, McKinnell i, CF Kemp, Sharma m, Kambadur r, K. Patel.
Отдел ветеринарных основных наук, королевский ветеринарный коллеж, Лондон NW1 ВНЕ, Великобритания.
Знаны, что антагонизирует Follistatin функцию нескольких членов TGF-бета семьи сделанных секретным сигнализируя факторов, включая Myostatin, самый мощный и АБС битор роста мышцы, котор характеризуют к дате. В этом изучении, мы сравниваем выражение Myostatin и Follistatin во время развития цыпленока и показываем что они выражены в близости или в перекрывая доменах для того чтобы предложить возможное взаимодействие во время развития мышцы. Мы выполнили дрожди и mammalian изучения 2-гибрида и показываем что Myostatin и Follistatin взаимодействующие сразу. Мы более добавочно показываем что одиночные модули протеина Follistatin не могут связать при Myostatin предлагая что весь протеин необходим для взаимодействия. Мы проанализировали кинетику взаимодействия 2 протеинов и нашли связи Myostatin того Follistatin с высоким сродством 5.84 x 10 (- 10) M. Мы затем испытали подавляет ли Follistatin деятельность при Myostatin во время развития мышцы. Мы подтвердили наше предыдущее замечание которое обработка лимба цыпленока отпочковывается с результатами Myostatin в строгом уменшении в выражении 2 ключевых myogenic регламентационных генов Pax-3 и MyoD. Однако, в присутствии к Follistatin, прегражено Myostatin-посредничанное ингибитирование выражения Pax-3 и MyoD. Мы дополнительно показываем что Myostatin блокирует терминальное дифференцирование клеток мышцы в high-density культурах клетки mesenchyme лимба (micromass) и что Follistatin спашет дифференцирование мышцы в concentration-dependent образе. В сводке, наши данные предлагают что Follistatin антагонизирует Myostatin сразу взаимодействием протеина, которое предотвращает Myostatin от исполнять свое inhibitory влияние на развитии мышцы.
PMID: 15136138 [PubMed - индексированное для MEDLINE]
Влияния peroxisome proliferator-активированной активации приемного устройства на транскрипции gonadotropin и митоза клетки наведенного протеинами косточки morphogenetic в клетках gonadotrope LbetaT2 мыши. Takeda m, Otsuka f, Otani h, Inagaki k, Miyoshi t, Suzuki j, Mimura y, Ogura t, H. Makino.
Отдел микстуры и клинической науки, средняя школа университета Okayama микстуры, зубоврачевание и фармацевтические науки, город 700-8558 Okayama, Япония.
Была сообщена запутанность peroxisome proliferator-активированной активации приемн-гаммы (PPAR-гаммы) и signaling протеина косточки morphogenetic (BMP) в регулируя пролиферации клетки и гормональной продукции туморов pituitary, хотя основной механизм остает бедно понятым. Здесь, мы расследовали регламентационные роли PPARalpha и PPARgamma в транскрипции gonadotropin и митоз клетки модулируемый системами pituitary activin/BMP используя линию T2 клетки gonadotropinoma мыши Lbeta, которая выражает приемные устройства activin/BMP, фактор Smads транскрипции, PPARalpha, и PPARgamma. В клетках T2 Lbeta, signaling BMP показанный фосфорилированием Smad1/5/8 и транскрипция Id-1 охотно были активированы BMPs. Агонист PPARgamma, pioglitazone значительно уменьшил BMP-наведенный синтез дна Lbeta T2; тогда как агонист PPARalpha, fenofibric кислота, не сделал. В соответствии с влияниями на митозе клетки, pioglitazone но fenofibric кислота значительно уменьшили BMP-наведенную активацию Id-1-Luc. Ни fenofibric кислота ни pioglitazone повлияли на signaling activin обнаруженный (CAGA) деятельностью 9-Luc. И ligands PPARalpha и PPARgamma сразу подавили transcriptional деятельности FSHbeta, LHbeta, и GnRHR. Активация PPARalpha и PPARgamma увеличила уровни mRNA follistatin, но не повлияла на выражение follistatin-родственного гена. Таким образом, агонисты PPAR не только сразу подавить транскрипцию gonadotropin и signaling BMP, но также заблокировать биологические действия activins которые облегчают транскрипцию gonadotropin через upregulating выражение follistatin. В добавлении, pioglitazone увеличило ligands mRNA BMP, но уменьшило activin-бета b mRNA в клетках T2 Lbeta. Собирательно, активация PPAR дифференциально регулирует пролиферацию клетки gonadotrope и транскрипцию gonadotropin в ligand-зависимом образе.
PMID: 17592024 [PubMed - индексированное для MEDLINE]
Это изучение смутило меня addmittedly… Agonism PPAR увеличивает follistatin уровней mRNA но не exression его? Настолько иначе говоря…. он не увеличил follistatin… ИЛИ он увеличил его путь мы хотели и хорошо для ваших мальчиков также?
--------------------------------
но:
(мной на cuttingedgemuscle.com)
J. FASEB 24-ое сентября 2007.Transgenic выражение иа АБС битор myostatin выведенного от follistatin увеличивает массу скелетной мышцы и ameliorates dystrophic патология в мышах mdx.Nakatani m, Takehara y, Sugino h, Matsumoto m, Hashimoto o, Hasegawa y, Murakami t, Uezumi a, Takeda s, Noji s, Sunada y, K. Tsuchida.
*Division для терапий против несговорчивых заболеваний, институт для всесторонних медицинских наук, университет здоровья Fujita, Toyoake, Aichi, Япония; Институт для исследования энзима, университет Tokushima, Tokushima, Япония; Лаборатории экспириментально животной науки, школа университета Kitasato ветеринарной медицины и животные науки, Towada, Aomori, Япония; Отдел молекулярной терапии, национального института нейронауки, национального центра неврологии и психиатрии, Kodaira, Токио, Япония; &&Отдел биологической науки и техники, факультета Инджиниринг, университета Tokushima, Tokushima, Япония; andDivision неврологии, отдела внутренней микстуры, медицинского института Кавасакии, Kurashiki, Okayama, Япония.
Myostatin мощный отрицательный регулятор роста скелетной мышцы. Поэтому, ингибитирование myostatin предлагает романную терапевтическую стратегию для мышечного dystrophy путем восстанавливать массу скелетной мышцы и подавлять прогрессирование вырождения мышцы.
Известные иы АБС битор myostatin включают propeptide myostatin, follistatin, follistatin-родственные протеины, и антитела myostatin.
Хотя follistatin показывает мощные myostatin-блокируя деятельности, оно также действует как эффективный и АБС битор activins. Потому что activins включаются в множественные функции в различных органах, их блокада follistatin повлияла бы на множественные ткани за исключением скелетных мышц. В текущем исследовании, мы сообщаем характеризацию иа АБС битор myostatin выведенного от follistatin, которое не влияет на signaling activin. Постоянные диссоциации (Kd) follistatin к activin и myostatin 1.72 nM и 12.3 nM, соответственно. контрастом, постоянные диссоциации (Kd) follistatin-выведенного иа АБС битор myostatin, обозначенное FS II, к activin и myostatin 64.3 microM и 46.8 nM, соответственно. Transgenic мыши выражая FS II, под контролем скелетного мышц-специфического промоутера показали увеличенную массу и прочность скелетной мышцы. Гиперплазия и гипертрофия оба наблюдались. Мы пересекли мышей с мышами mdx, модель FS II transgenic для dystrophy Duchenne мышечного. Заметно, скелетные мышцы в мышах mdx/FS II показали укрупненность и уменьшили инфильтрат клетки. Прочность мышцы также взята в мышах mdx/FS II. Эти результаты показывают что блокада myostatin FS II имеет терапевтический потенциал для мышечного dystrophy.
-------------------------------
очень более лучше:
propeptide myostatin.
Biol Chem. 25-ое октября 2002; 277 (43): 40735-41. Epub 22-ое августа 2002.Propeptide myostatin и follistatin-родственный ген inhibitory binding протеины myostatin в нормальной сыворотке.Холм JJ, Davies MV, Pearson AA, Wang JH, RM Hewick, Wolfman NM, Qiu Y.
Отдел химии протеина и Proteomics, исследования Wyeth, привода парка 87 Кембридж, Кембридж, MA 02140, США.
Myostatin, также известное как фактор 8 роста и дифференцирования, член преобразовывая superfamily фактора роста бета который отрицательно регулирует массу скелетной мышцы (1). Недавние эксперименты показывали что деятельность при myostatin обнаружена в сыворотке assay гена репортера только после активации кислотой, предлагая что родное myostatin обеспечивает циркуляцию как скрытый комплекс (2). Мы использовали моноклональное антитело myostatin, JA16, для того чтобы изолировать родной комплекс myostatin от нормальной сыворотки мыши и человека. Анализ массовым спектрометрированием и западной помаркой показывает что обеспечивая циркуляцию myostatin прыгнуто к хотя бы 2 главным протеинам, propeptide myostatin и follistatin-родственному гену (FLRG). Знаны, что связывает и блокирует propeptide myostatin myostatin в vitro (3). Здесь мы показываем что это взаимодействие уместно внутри - vivo, с большинством (>70%) myostatin в сыворотке прыгнутой к своему propeptide. Изучения с рекомбинатным протеином V5-His-tagged FLRG подтверждают прямое взаимодействие между возмужалыми myostatin и FLRG. Функциональные изучения показывают что FLRG блокирует деятельность при myostatin в assay гена репортера. Эти эксперименты предлагают что propeptide myostatin и FLRG главные отрицательные регуляторы myostatin внутри - vivo.
-------------------------------------------------
Людские факторы роста & Cytokines
Рекомбинатное людское Myostatin-Propeptide
Описание:
Mature Myostatin is obtained by proteolytic processing of a biologically-inactive precursor protein, which contains an N-terminal propeptide of 243 amino acid residues. Myostatin Propeptide exhibits high binding affinity for myostatin and has been shown to be a potent inhibitor of Myostatin.
Over-expression of myostatin propeptide in mice resulted in large increases (up to 200%) in skeletal muscle mass, similar to those observed in Myostatin knockout mice. Recombinant Human Myostatin Propeptide is a 27.8 kDa protein consisting of 244 amino acid residues.
Catalog #:
120-12
Source :
E.coli
Stability :
The lyophilized protein is stable for a few weeks at room temperature, but best stored at -200C. Reconstituted Myostatin Propeptide should be stored in working aliquots at -200C.
Purity :
Greater than 98% by SDS-PAGE.
Endotoxin Level :
Endotoxin level is less than 0.1 ng per g (1EU/g).
Biological Activity :
Testing in progress.
AA Sequence :
MNENSEQKEN VEKEGLCNAC TWRQNTKSSR IEAIKIQILS KLRLETAPNI SKDVIRQLLP KAPPLRELID QYDVQRDDSS DGSLEDDDYH ATTETIITMP TESDFLMQVD GKPKCCFFKF SSKIQYNKVV KAQLWIYLRP VETPTTVFVQ ILRLIKPMKD GTRYTGIRSL KLDMNPGTGI WQSIDVKTVL QNWLKQPESN LGIEIKALDE NGHDLAVTFP GPGEDGLNPF LEVKVTDTPK RSRR
5g$75 -------25g$185--------1mg$4800
-----------------------------------
or the myostatin antibodies.
the antibody polyclonal:
Product Name
GDF8 antibody
Catalog Number
GTX30381
Product Description:
Anti - GDF8 polyclonal
Manufacturer & Mfg Part#:
Novus NB 100-281
Cross Reactivity:
This product recognizes human and mouse GDF8. Other species have not been tested.
Storage Instruction:
Store at 2-8 Celcius.
Concentration:
1 mg/ml
Clonality:
POLYCLONAL
Tested Applications:
Immunohistochemistry, Western blot
Form:
Liquid
Specificity:
This antibody is specific for human GDF8.
Concentration Unit:
mg/ml
Immunogen:
A synthetic peptide, which represented a portion of human Growth Differentiation Factor 8 encoded within exon 3 (LocusLink ID 2660).
$ 2750 a mg.
---------------------------
---------------------------
by me at cuttingedgemuscle.com
related to PPARs:
Cancer Res. 2007 Jul 1;67(13):6512-9.
Are peroxisome proliferator-activated receptors involved in skeletal muscle wasting during experimental cancer cachexia? Role of beta2-adrenergic agonists.Fuster G, Busquets S, Ametller E, Olivan M, Almendro V, de Oliveira CC, Figueras M, Lpez-Soriano FJ, Argils JM.
Cancer Research Group, Departament de Bioqumica i Biologia Molecular, Facultat de Biologia, Universitat de Barcelona, Barcelona, Spain.
Implantation of the Yoshida AH-130 ascites hepatoma to rats resulted in
a decrease in muscle weight 7 days after the inoculation of the tumor.
These changes were associated with increases in the mRNA content for both peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) gamma and PPAR delta in skeletal muscle.* The increase in gene expression for these transcription factors was related to increases in the expression of several genes involved in fatty acid transport, activation, and oxidation. Tumor burden also resulted in increases in PPAR gamma coactivator-1 alpha gene expression and pyruvate dehydrogenase kinase 4. All these changes in lipid metabolism genes suggest that a metabolic shift occurs in skeletal muscle of tumor-bearing rats toward a more oxidative phenotype. Formoterol treatment to tumor-bearing rats resulted in an amelioration of all the changes observed as a result of tumor burden.
Administration of this beta(2)-adrenergic agonist also resulted in a decrease in mRNA content of muscle PPAR alpha, PPAR delta, and PPAR gamma, as well as in mRNA levels of many of the genes involved in both lipid and mitochondrial metabolism. All these results suggest an involvement of the different PPARs as transcription factors related with muscle wasting and also indicate that a possible mode of action of the anticachectic compound formoterol may involve a normalization of the levels of these transcription factors.
J Med Genet. 2007 Sep;44(9):e88.
New PPARG mutation leads to lipodystrophy and loss of protein function that is partially restored by a synthetic ligand.Ldtke A, Buettner J, Schmidt HH, Worman HJ.
Departments of Medicine and of Anatomy and Cell Biology, College of Physicians and Surgeons, Columbia University, New York, NY 10032, USA.
PURPOSE: Familial partial lipodystrophy caused by mutations in the PPARG gene is characterised by altered distribution of subcutaneous fat, muscular hypertrophy and symptoms of metabolic syndrome. PPARG encodes peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)gamma, a nuclear hormone receptor playing a crucial role in lipid and glucose metabolism and in several other cellular regulatory processes. METHODS: PPARG was screened for mutations by direct sequencing in two patients with lipodystrophy, one unaffected family member and 124 controls. Body composition was examined in affected patients, and they were investigated for abnormalities in laboratory results. Functional analysis of the mutant protein was assessed by determining transcriptional activity and possible interference with the wild-type protein. RESULTS: In two patients with familial partial lipodystrophy, we identified a nucleotide substitution in the PPARG gene. This mutation results in the substitution of aspartate by asparagine at residue 424 (D424N) in the ligand-binding domain of PPARgamma. The unaffected family member and all 124 controls did not carry this mutation. D424N PPARgamma had a significantly lower ability than wild-type PPARgamma to activate a PPARgamma-stimulated reporter gene, but did not exert a negative effect on the wild-type protein. Partial activation of D424N PPARgamma was achieved in the presence of the agonist rosiglitazone. CONCLUSION: We report a new PPARG mutation, D424N, which is located in the ligand-binding domain of the protein and leads to familial partial lipodystrophy. D424N PPARgamma exhibited a loss of function, which was partially restored by adding the PPARgamma agonist rosiglitazone, suggesting possible treatment potential of this agent.
Neurology. 2007 Feb 27;68(9):677-83.
Muscle and nerve pathology in Dunnigan familial partial lipodystrophy.Spuler S, Kalbhenn T, Zabojszcza J, van Landeghem FK, Ludtke A, Wenzel K, Koehnlein M, Schuelke M, Ldemann L, Schmidt HH.
Muscle Research Group, Department of Neurology, Medical Faculty of the Charit, Berlin, Germany.
OBJECTIVE: To characterize muscle and nerve pathology in Dunnigan familial partial lipodystrophy (FPLD). METHODS: We used conventional histology, immunohistochemistry, messenger RNA (mRNA) expression, gene sequencing, and clinical studies of 13 patients with neuromuscular involvement. RESULTS: The clinical findings consisted of muscle hypertrophy (12/13), severe myalgias (9/13), and multiple nerve entrapment syndromes (8/13). Skeletal muscle histology demonstrated marked Type 1 and 2 muscle fiber hypertrophy and nonspecific myopathic changes, whereas numerous paranodal myelin swellings (tomacula) were found in sural nerve biopsies. We found that myostatin mRNA expression was reduced in patients with FPLD vs controls. We sequenced the myostatin gene in our subjects, but found no mutations. We then investigated whether or not SMAD, the intracellular mediator of myostatin signaling, might be impaired in patients with FPLD. We found that in FPLD muscle, a large number of SMAD molecules adhered to the nuclear membrane and were not found within the nucleus, compared with normal muscle or muscle from a patient with a non-FPLD lamin A/C disease. CONCLUSION: The myopathy and neuropathy associated with Dunnigan familial partial lipodystrophy are distinct from other lamin A/C disorders. We hypothesize that the lipodystrophy-associated mutation interferes with SMAD signaling, linking this type of lipodystrophy to the phenotypically similar myostatin deficiency.
----------------------------------
see the hypertrophy image at:
http://www.scielo.br/scielo.php?pid=S0021-...ttext&tlng=------------------------------------
------------------------------------
*by me at mindandmuscle:
PPAR Delta agonism, muscle atrophy.
http://www.mindandmuscle.net/forum/index.p...c=31355&hl=J Physiol. 2007 Aug 15;583(Pt 1):381-90.
PPARdelta agonism induces a change in fuel metabolism and activation of an atrophy programme, but does not impair mitochondrial function in rat skeletal muscle.Constantin D, Constantin-Teodosiu D, Layfield R, Tsintzas K, Bennett AJ, Greenhaff PL.
Centre for Integrated Systems Biology and Medicine, Queens Medical Centre, University of Nottingham Medical School, Nottingham NG7 2UH, UK.
PPARalpha agonism impairs mitochondrial function, but the effect of PPARdelta agonism on mitochondrial function is equivocal. Furthermore, PPARalpha and delta agonism increases muscle fatty acid oxidation, potentially via activation of FOXO1 signalling and PDK4 transcription. Since FOXO1 activation has also been suggested to increase transcription of MAFbx and MuRF-1, and thereby the activation of ubiquitin-proteasome mediated muscle proteolysis, this raises the possibility that muscle fuel selection and the induction of a muscle atrophy programme could be regulated by a single common signalling pathway. We therefore investigated the effect of PPARdelta (delta) agonist, GW610742, administration on muscle mitochondrial function, fuel regulation, and atrophy and growth related signalling pathways in vivo. Twenty-four male Wistar rats received vehicle or GW610742 (5 and 100 mg per kg body mass (bm)) orally for 6 days. Soleus muscle was used to determine maximal rates of ATP production (MRATP) in isolated mitochondria, gene and protein expression, and enzyme activities. MRATP were unchanged by GW610742. Muscle PDK2 and PDK4 mRNA expression increased with GW610742 (100 mg (kg bm)(-1)) compared to vehicle (P<0.05), and was paralleled by a twofold increase in PDK4 protein expression (P<0.05). The activity of beta-hydroxyacyl-CoA dehydrogenase increased with GW610742 (P<0.05). Muscle MuRF1 and MAFbx mRNA expression was increased by GW610742 (100 mg (kg bm)(-1)) compared to vehicle (P<0.05), and was matched by increased protein expression (P<0.001), whilst Akt1 protein declined (P<0.05). There was no effect of GW610742 on 20S proteasome activity and mRNA expression, or the muscle DNA: protein ratio. GW610742 switched muscle fuel metabolism towards decreased carbohydrate use and enhanced lipid utilization, but did not induce mitochondrial dysfunction. Furthermore, GW610742 initiated a muscle atrophy programme, possibly via changes in the Akt1/FOXO/MAFbx and MuRF1 signalling pathway.
now i ampursuing, direct ways to increasing AMPK activity (but only at adipocytes).
AT least PPARs Alpha and Delta, raises suspicions in me.
what do you think ?, in the same dish; Myostain, Follistatin, Activin, PPARs, Beta2 Adrenergic agonists, PDK4.
----------------------------
----------------------------
Muscle Nerve. 2005 Jan;31(1):34-40.
Loss of myostatin expression alters fiber-type distribution and expression of myosin heavy chain isoforms in slow- and fast-type skeletal muscle.Girgenrath S, Song K, Whittemore LA.
Wyeth Department of Cardiovascular and Metabolic Diseases, 87 Cambridge Park Drive, Cambridge, Massachusetts 02140, USA.
Myostatin (Mstn) is a member of the transforming growth factor-beta family that negatively regulates skeletal muscle mass. Mstn knockout mice have greater skeletal muscle mass than wild-type littermates. We investigated the effect of Mstn on fiber type by comparing adult muscles from the murine Mstn knockout with wild-type controls. Based on myofibrillar ATPase staining, the soleus of Mstn knockout mice displays a larger proportion of fast type II fibers and a reduced proportion of slow type I fibers compared with wild-type animals. Based on staining for succinate dehydrogenase (SDH) activity, a larger proportion of glycolytic fibers and a reduced proportion of oxidative fibers occur in the extensor digitorum longus (EDL) of Mstn knockouts. These differences in distribution of fiber types are accompanied by differences in the expression of myosin heavy chain (MHC) isoforms. In both Mstn knockout soleus and EDL, larger numbers of faster MHC isoforms are expressed at the expense of slower isoforms when compared with wild-type littermates. Thus, the absence of Mstn in the knockout mouse leads to an overall faster and more glycolytic muscle phenotype. This muscle phenotype is likely a consequence of developmental processes, and
inhibition of Mstn in adults does not cause a transformation to a more fast and glycolytic phenotype. Our findings suggest that myostatin has a critical role in regulating the formation, proliferation, or differentiation of fetal myoblasts and postnatal fibers..